Geistlich TauroSept®

Prävention und Therapie von Katheterinfektionen durch breite antimikrobielle Wirkung

Geistlich TauroSept® enthält 2 % des antimikrobiellen Chemotherapeutikums Taurolidin. Im Gegensatz zu Antibiotika wirkt Taurolidin über eine chemische Reaktion mit mikrobiellen Zellwandstrukturen. Mikroorganismen werden dadurch abgetötet und entstehende Toxine inaktiviert. Die Abtötungszeit beträgt in vitro 15–30 Minuten. Taurolidin besitzt ein sehr breites bakterizides und fungizides Wirkungsspektrum und ist auch gegen Methicillin- und Vancomycin-resistente Bakterien (MRSA, VISA und VRE) wirksam. (1, 2, 3, 4)
Die präventive Instillation von Geistlich TauroSept® hilft drohende ZVK-Besiedelungen zu vermeiden. (5, 6, 7, 8) Bei schon bestehender Besiedelung kann durch Behandlung des ZVKs mit Geistlich TauroSept® in Kombination mit systemischen Antibiotika die mikrobielle Kontamination beseitigt und in vielen Fällen die Entfernung des ZVK vermieden oder lange hinausgezögert werden. (9, 10)

 

Verlässlichkeit in der Langzeitanwendung – keine drohende bakterielle Resistenzentwicklung

Im langjährigen klinischen Einsatz wurde bisher keine bakterielle Re-sistenzentwicklung gegen den Wirkstoff Taurolidin berichtet. Durch den besonderen Wirkungsmechanismus von Taurolidin, der auf einer Reaktion mit der Bakterienzellwand beruht, ist im Gegensatz zu Antibiotika eine Resistenzentwicklung unwahrscheinlich und nicht zu erwarten. (11, 12)

 

Störung der Verhindern der Biofilmentstehung durch Hemmung der bakteriellen Besiedelung

Bereits in geringen Konzentrationen bewirkt Taurolidin den Verlust der Fimbrien und Flagellen von Bakterien. Durch die Veränderung ihrer Oberfläche verlieren die Mikroorganismen ihre Fähigkeit zur Koloniebildung und die Anheftung an Oberflächen von Geweben und Biomaterialien wird verhindert. Diese antiadhäsive Eigenschaft von Taurolidin wirkt einer Biofilmbildung entgegen. (13, 14)

 

Förderung der intraluminalen Hämodynamik durch Reduktion  lokaler pathologischer Gerinnungsprozesse

Im Gegensatz zu Heparin bewirkt Taurolidin eine zeit- und konzentrationsabhängige Hemmung der Staphylokoagulase induzierten Blutgerinnung. So verringert Taurolidin das Risiko einer pathologischen Staphylokoagulasebedingten Blutgerinnung insbesondere in der Katheterspitze. (15)

 

Sicherheit in der Anwendung durch ausgezeichnetete systemische Verträglichkeit

Taurolidin ist auch als pharmazeutischer Wirkstoff zur lokalen Behandlung von Infektionen wie z. B. Peritonitis zugelassen. Hierzu werden bis zu 200 ml Taurolidin 2 % täglich in die Bauchhöhle instilliert und über das Peritoneum vollständig resorbiert. Bisher sind dabei keine systemischen Nebenwirkungen beobachtet worden. Die Sicherheit des Wirkstoffs Taurolidin hat sich auch in klinischen Studien bei intravenöser Langzeitapplikation hoher Dosen (bis zu 20  g täglich) bestätigt. (16) Taurolidin wird im Organismus rasch über die ebenfalls antimikrobiell wirksamen Metabolite Taurultam und Methylol-Taurinamid zu Taurin (einer endogenen Aminosulfonsäure), CO2 und H2O verstoffwechselt. (17) Daher sind keine toxischen Effekte bekannt und im Fall einer versehentlichen Injektion nicht zu erwarten.

 

Referenzen:

  1. Olthof, E. D., R. J. Rentenaar, et al. (2013). “Absence of microbial adaptation to taurolidine in patients on home parenteral nutrition who develop catheter related bloodstream infections and use taurolidine locks.” Clin Nutr 32 (4): 538–42.

  2. Olthof, E. D., R. Nijland, et al. (2015). “Microbiocidal effects of various taurolidine containing catheter lock solutions.” Clin Nutr 34 (2): 309–14.

  3. Torres-Viera, C., C. Thauvin-Eliopoulos, et al. (2000). “Activities of taurolidine in vitro and in experimental enterococcal endocarditis.” Antimicrob Agents Chemother 44(6): 1720-4.

  4. Traub, W. H., B. Leonhard, et al. (1993). “Taurolidine: in vitro activity against multiple-antibiotic-resistant, nosocomially significant clinical isolates of Staphylococcus aureus, Enterococcus faecium, and diverse Enterobacteriaceae.” Chemotherapy 39(5): 322–30.

  5. Bisseling, T. M., M. C. Willems, et al. (2010). “Taurolidine lock is highly effective in preventing catheter-related bloodstream infections in patients on home parenteral nutrition: a heparin- controlled prospective trial.” Clin Nutr 29(4): 464–8.

  6. Jonkers, C., K. I. Looman, et al. (2012). “Incidence of central venous catheter related bloodstream infections in adults and children on home parenteral nutrition: heparin versus taurolidine catheter lock “ Clinical Nutrition Supplements 7(1): 203–204.

  7. Jurewitsch, B., T. Lee, et al. (1998). “Taurolidine 2 % as an antimicrobial lock solution prevention of recurrent catheter-related bloodstream infections.” JPEN J Parenter Enteral Nutr 22(4): 242–4.

  8. Olthof, E. D., M. W. Versleijen, et al. (2014). “Taurolidine Lock Is Superior to Heparin Lock in the Prevention of Catheter Related Bloodstream Infections and Occlusions.” PLoS One 9 (11): e111216.

  9. Koldehoff, M. and J. L. Zakrzewski (2004). “Taurolidine is effective in the treatment of central venous catheter-related bloodstream infections in cancer patients.” Int J Antimicrob Agents 24(5): 491–5.

  10. Weber, M., F. Meyer, et al. (2009). “[Spectrum of indications and perioperative management in i. v. port-a-cath explantation-alternative administration of taurolin in case of i. v. port-a-cath infection].” Zentralbl Chir 134(4): 350–6.

  11. Gorman, S. P., D. F. McCafferty, et al. (1987). “Reduced adherence of micro-organisms to human mucosal epithelial cells following treatment with Taurolin, a novel antimicrobial agent.” J Appl Bacteriol 62(4): 315–20.

  12. Blenkharn, J. I. (1987). “The antibacterial and anti-endotoxin activity of taurolidine in combination with antibiotics.” Surg Res Comm 2: 149–155.

  13. Blenkharn, J. I. (1988). “Sustained anti-adherence activity of taurolidine (Taurolin) and noxythiolin (Noxyflex S) solutions.” J Pharm Pharmacol 40(7): 509–11.

  14. Gorman, S. P., D. F. McCafferty, et al. (1987). “Reduced adherence of micro-organisms to human mucosal epithelial cells following treatment with Taurolin, a novel antimicrobial agent.” J Appl Bacteriol 62(4): 315–20.

  15. Reinmuller, J. (1999). “[The influence of taurolidine on physiological and pathological blood coagulation and implications for its use].” Zentralbl Chir 124 Suppl 4: 13–8.

  16. Gong, L., H. E. Greenberg, et al. (2007). “The pharmacokinetics of taurolidine metabolites in healthy volunteers.” J Clin Pharmacol 47(6): 697–703.

  17. Knight, B. I., G. G. Skellern, et al. (1981). “The characterisation and quantitation by high- performance liquid chromatography of the metabolites of taurolin.” Br J Clin Pharmacol 12 (3): 439–40.